Бактерицидные облучатели открытого типа: Облучатели бактерицидные открытого типа, рециркуляторы закрытого типа

Выберите дистрибьютора

OBN LITE2 130

Дистрибьютор

В наличии:

Количество:

Ассоциация компаний «Русский Свет»

299 шт Ростов-на-Дону 50 Новосибирск 50 Тула 50 Самара 50 Тверь 50 Екатеринбург 49

– +

Выберите дистрибьютора

OBN LITE2 130 SET

Дистрибьютор

В наличии:

Количество:

Выберите дистрибьютора

OBN LITE1 215

Дистрибьютор

В наличии:

Количество:

АВС-электро

3 шт Рязань, Световые Технологии 3

– +

Ассоциация компаний «Русский Свет»

3 шт Рязань, Световые Технологии 3

– +

ГК ФОРУМ ЭЛЕКТРО

3 шт Рязань, Световые Технологии 3

– +

ИДЖИТЕХ

3 шт Рязань, Световые Технологии 3

– +

Лампа Онлайн

3 шт Рязань, Световые Технологии 3

– +

СТК «Толедо»

3 шт Рязань, Световые Технологии 3

– +

Техдизайн

3 шт Рязань, Световые Технологии 3

– +

Элекон

3 шт Рязань, Световые Технологии 3

– +

ЭТМ

3 шт Рязань, Световые Технологии 3

– +

Выберите дистрибьютора

OBN LITE1 215 SET

Дистрибьютор

В наличии:

Количество:

Выберите дистрибьютора

OBN LITE2 230

Дистрибьютор

В наличии:

Количество:

Выберите дистрибьютора

OBN LITE2 230 SET

Дистрибьютор

В наличии:

Количество:

Скачать

Материалы для загрузки

Документы

Сертификаты

Светильники

Аксессуары

	Название	Кол-во на одну модель	Артикул	Вес, кг	Базовая цена
	Лампа UV lamp 15Wt	Кол-во на одну модель:2	Артикул:3995004930	Вес, кг:0. 32	Базовая цена:от 2415 руб	Добавить в корзину Добавить в корзину + Выберите дистрибьютора Лампа UV lamp 15Wt Дистрибьютор В наличии: Количество: АВС-электро 1226 шт Рязань, Световые Технологии 1226 – + Ассоциация компаний «Русский Свет» 1226 шт Рязань, Световые Технологии 1226 – + ГК ФОРУМ ЭЛЕКТРО 1226 шт Рязань, Световые Технологии 1226 – + ИДЖИТЕХ 1226 шт Рязань, Световые Технологии 1226 – + Лампа Онлайн 1226 шт Рязань, Световые Технологии 1226 – + СТК «Толедо» 1226 шт Рязань, Световые Технологии 1226 – + Техдизайн 1226 шт Рязань, Световые Технологии 1226 – + Элекон 1226 шт Рязань, Световые Технологии 1226 – + ЭТМ 1226 шт Рязань, Световые Технологии 1226 – +
	Лампа UV lamp 30Wt	Кол-во на одну модель:1	Артикул:3995004940	Вес, кг:0. 32	Базовая цена:от 2625 руб	Добавить в корзину Добавить в корзину + Выберите дистрибьютора Лампа UV lamp 30Wt Дистрибьютор В наличии: Количество: АВС-электро 2894 шт Рязань, Световые Технологии 2894 – + Ассоциация компаний «Русский Свет» 2894 шт Рязань, Световые Технологии 2894 – + ГК ФОРУМ ЭЛЕКТРО 2894 шт Рязань, Световые Технологии 2894 – + ИДЖИТЕХ 2894 шт Рязань, Световые Технологии 2894 – + Лампа Онлайн 2894 шт Рязань, Световые Технологии 2894 – + СТК «Толедо» 2894 шт Рязань, Световые Технологии 2894 – + Техдизайн 2894 шт Рязань, Световые Технологии 2894 – + Элекон 2894 шт Рязань, Световые Технологии 2894 – + ЭТМ 2894 шт Рязань, Световые Технологии 2894 – +

Облучатели ультрафиолетовые бактерицидные

Облучатель-рециркулятрор предназначен для эксплуатации в отапливаемых помещениях с искусственно регулируемыми климатическими условиями при температуре окружающего воздуха от плюс 10°С до плюс 35°С с относительной влажностью до 80% (при температуре плюс 25°С) и атмосферном давлении 83,7-106,4 кПа.

Питание облучателя осуществляется от сети переменного тока частотой 50 Гц, номинальным напряжением 230 В при отклонении напряжения сети на плюс 10%, минус 15% от номинального значения.

Технические характеристики

• Тип УФ лампы, TUV 30W «PHILIPS» ;
• Климатическое исполнение УХЛ 4.2 по ГОСТ 15150-69;
• Класс защиты по электробезопасности по ГОСТ Р 50267.0.2-2005, I, тип Н.

Дополнительные опции

• таймер;
• контроль работы ламп.

Похожая продукция

Зачем нужны бактерицидные облучатели?

Бактерицидная лампа — это полезное медицинское устройство, которое должно быть в каждой больнице и лаборатории. Как известно, воздух — идеальная среда для размножения микроорганизмов и вирусов. Именно поэтому бактерицидная медицинская лампа необходима для обезвреживания и очистки помещения. В чем особенность использования бактерицидных устройств? С момента создания это устройство использовалось исключительно в лабораториях и больницах, но сегодня светильник можно использовать и дома.

Применение облучателей

Лампа бактерицидная Украина делится на два основных типа: ламповые кварцевые и медицинские. Кварцевый прибор дезинфицирует помещение ультрафиолетовым излучением и, в отличие от обычного прибора, имеет кварцевое стекло для лампы. Через кварцевое стекло будут проходить любые радиационные волны, но после использования помещение необходимо в обязательном порядке проветривать. Если говорить о медицинских лампах, ультрафиолетовое излучение проходит через определенный диапазон.

Для обоих типов бактерицидных ламп одинаково стабильное функционирование от сети.Таким образом, во время сбоя питания срок службы лампы не занижается. На работу и долговечность также влияет чистота прибора, поэтому лампы необходимо чистить. По времени работы бактерицидная лампа срабатывает в зависимости от типа прибора и площади помещения. Светильники быстро дезинфицируют помещения от вредных бактерий в общественных зданиях и дома. С помощью бактерицидных ламп Киев улучшает здоровье.

Однако перед использованием лампы важно внимательно ознакомиться с инструкцией по характеристикам и принципам работы устройства.Важный момент — нельзя присутствовать при эксплуатации радиатора. Ультрафиолетовые волны, излучаемые лампой, небезопасны для живых организмов. Но это касается только бактерицидных ламп открытого типа. Закрытые бактерицидные лампы не вредят человеку.

Виды бактерицидных облучателей

Также бактерицидная лампа делится на три способа крепления:

• Лампа бактерицидная для пола. Это отличный вариант для больших комнат (игровой или гостиной). Торшеры имеют средний размер и, как правило, располагаются в углу;
  
• Лампа бактерицидная настольная. Эта мощная и компактная модель идеально подходит для домашнего использования. Преимущество этого устройства в том, что его можно использовать для локальной очистки. Аппарат подходит для местного облучения;
  
• Подвесной светильник бактерицидный Киев. Устройство для стационарного использования надежно фиксируется на стене или потолке, а современный внешний вид вписывается в любой интерьер. Отметим, что цена …
  

Следует отметить ряд важных моментов, из-за которых стоит покупать прибор:

• Терапия и хорошая профилактика заболеваний ушей, горла, носа. ;
  
• Комплексный уход за кожей, применение при растяжках и воспалениях;
  
• Дезинфекция помещения и успокаивающее действие на нервную систему и расслабление организма.
  

Купить бактерицидный облучатель в Медик

Лампа бактерицидная — популярный прибор для лабораторий, медицинских учреждений и для дома. Облучение ультрафиолетом также часто применяется в санаториях и других оздоровительных учреждениях.

На сайте Медика доступна любая бактерицидная лампа открытого и закрытого типа. Покупайте модели онлайн или свяжитесь с нашими менеджерами онлайн. Отправляем надежные бактерицидные лампы по доступной цене по всей Украине.

Исследовательское клиническое испытание безопасности и бактерицидного действия ультрафиолетового излучения С 222 нм у здоровых людей

Аннотация

Введение

Инфекция в области хирургического вмешательства — одно из самых тяжелых осложнений хирургического лечения. Однако оптимальная процедура предотвращения таких инфекций остается неисследованной. Ультрафиолетовое излучение C (UVC) с короткой длиной волны обладает высоким бактерицидным действием; однако он цитотоксичен.Тем не менее, учитывая, что УФС с длиной волны 222 нм достигает только рогового слоя, он не влияет на клетки кожи. Это исследование было направлено на изучение безопасности излучения UVC с длиной волны 222 нм и изучение его эффекта стерилизации кожи у здоровых добровольцев.

Методы

Это испытание проводилось на 20 здоровых добровольцах. Спину испытуемого облучали УФС с длиной волны 222 нм при 50–500 мДж / см ² и оценивали вызванную эритему (покраснение кожи). Затем спину облучали максимальным количеством ультрафиолетового излучения, не вызывающего эритему, и культивировали мазки с кожи до и после облучения.Количество колоний, образовавшихся через 24 часа, измеряли. Кроме того, димер циклобутенпиримидина (ЦПД) как индикатор повреждения ДНК измеряли с использованием кожных тканей необлученных и облученных областей.

Результаты

У всех субъектов не было эритемы при всех дозах. Спину субъекта облучали при 500 мДж / см ² , и количество бактериальных колоний в культуре мазков с кожи было значительно уменьшено с помощью УФ-излучения с длиной волны 222 нм. Количество CPD, образовавшееся в облучаемой области, было немного, но значительно выше, чем в необлученной области.

Заключение

УФС 222 нм при 500 мДж / см ² представлял собой безопасную дозу облучения и обладал бактерицидным действием. Ожидается, что в будущем УФ-излучение с длиной волны 222 нм будет способствовать предотвращению периоперационной инфекции.

Образец цитирования: Fukui T, Niikura T., Oda T, Kumabe Y, Ohashi H, Sasaki M, et al. (2020) Исследовательское клиническое испытание безопасности и бактерицидного действия ультрафиолетового излучения С 222 нм у здоровых людей. PLoS ONE 15 (8): e0235948.https://doi.org/10.1371/journal.pone.0235948

Редактор: Фелипе Даль Пиццол, Universidade do Extremo Sul Catarinense, БРАЗИЛИЯ

Поступила: 29 октября 2019 г .; Принят в печать: 24 июня 2020 г .; Опубликовано: 12 августа 2020 г.

Авторские права: © 2020 Fukui et al. Это статья в открытом доступе, распространяемая в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution License, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии указания автора и источника.

Доступность данных: Все соответствующие данные находятся в документе и его файлах с вспомогательной информацией.

Финансирование: Это исследование в основном финансируется отделением ортопедической хирургии Высшей школы медицины Университета Кобе и частично поддерживается Ushio Inc., включая аренду оборудования для УФ-облучения. Финансирующее агентство предоставило поддержку в виде заработной платы авторам (H.O., M.S. и T.I.). Их конкретные роли заключаются в следующем; H.O.: курирование данных и методология, M.S .: исследование и методология, T.I .: концептуализация и курирование данных. Финансирующие организации не играли никакой роли в дизайне исследования, сборе и анализе данных, принятии решения о публикации или подготовке рукописи.

Конкурирующие интересы: H.O., M.S. и T. I. получили поддержку в виде заработной платы от USHIO Inc., Токио, Япония. Конкретные роли этих авторов сформулированы в разделе «Авторский вклад». Это не влияет на нашу приверженность политике PLOS ONE в отношении обмена данными и материалами.

Введение

Хирургическое лечение чревато некоторыми осложнениями, и инфекция области хирургического вмешательства (ИОХВ) признана одним из наиболее серьезных осложнений. Как только инфекция установлена, лечение усложняется, что ложится тяжелым бременем как на пациента, так и на медицинский персонал. Например, послеоперационная инфекция после остеосинтеза перелома кости иногда приводит к остеомиелиту, и лечение может занять несколько лет, что в худшем случае приводит к ампутации конечности.Хотя введение антибиотиков на основе установленных руководств обычно используется для предотвращения SSI, SSI все еще остается частым явлением. Поэтому необходимо установить более эффективные меры предосторожности [1].

Есть два пути заражения бактериями, вызывающими ИОХВ. Одно из них — эндогенные вещества, такие как резидентные бактерии на коже пациента и слизистой оболочке носа, а другое — экзогенные бактерии, такие как бактерии, переносимые воздухом [2, 3]. Хотя в настоящее время нет единого мнения о том, что более важно, во многих сообщениях подчеркивается участие эндогенной бактериальной инфекции [4, 5].Поэтому за основу можно рассматривать профилактику эндогенной бактериальной инфекции [6]. Простыня Incise широко используется и эффективна для предотвращения SSI; однако его можно удалить во время операции, что увеличивает скорость инфицирования из-за размножения эндогенных бактерий вокруг разреза [7]. Для подавления как эндогенных, так и экзогенных бактериальных инфекций необходимо постоянно подавлять заражение хирургической раны из-за размножения внутренних кожных бактерий во время операции, даже в хирургических полях, достаточно продезинфицированных перед операцией.

Ультрафиолетовое излучение подразделяется на три следующих диапазона: ультрафиолетовое излучение A (UVA), ультрафиолетовое излучение B (UVB) и ультрафиолетовое излучение C (UVC) в зависимости от длины волны, в зависимости от его биологического действия. UVC имеет короткую длину волны от 200 до 280 нм и высокий коэффициент поглощения ДНК; обладает высоким бактерицидным действием [8]. Предыдущий отчет продемонстрировал, что интраоперационное облучение УФС с длиной волны 254 нм от облучателя, установленного на потолке операционной, снижает частоту послеоперационных инфекций [9].В настоящее время устройства, используемые для облучения УФС с длиной волны 254 нм, одобрены для лечения инфицированных ран в США и Канаде и используются в клинической практике [10–12]. Однако облучение УФС цитотоксично, и существует риск развития злокачественной опухоли; таким образом, желателен более безопасный способ.

При воздействии на кожу УФС с длиной волны 254 нм проходит через роговой слой и достигает эпидермиса, поражая клетки эпидермиса. Напротив, УФС с длиной волны 222 нм имеет высокий коэффициент поглощения белка [13] и достигает только самого внешнего рогового слоя эпидермиса [14].Следовательно, он не влияет на клетки кожи; следовательно, теоретически он может быть более безопасным методом УФ-облучения.

Предположительно, облучение ультрафиолетовым излучением с длиной волны 222 нм может значительно снизить частоту ИОХВ и может быть клинически применено к операционному полю. Однако, насколько нам известно, хотя безопасность и стерилизующий эффект этого типа облучения были продемонстрированы в исследовании на животных [15], они никогда не изучались на людях. Таким образом, это исследование было направлено на изучение возможности и потенциального бактерицидного эффекта этого типа облучения, что является предпосылкой для будущих клинических испытаний по профилактике SSI и предотвратимых периоперационных осложнений.

Методы

Дизайн исследования

Это исследование представляет собой индивидуальное исследовательское клиническое испытание с участием здоровых субъектов, проведенное в университетской больнице Кобе. Протокол и форма информированного согласия этого исследования были одобрены институциональным наблюдательным советом университетской больницы Кобе (номер утверждения 2

Участников

В это исследование были включены здоровые добровольцы в возрасте 20–80 лет без отклонений от нормы в месте облучения ультрафиолетовым излучением, которые предоставили письменное согласие на участие и не соответствовали ни одному из критериев исключения, перечисленных в таблице 1. Период набора участников был установлен как 11 месяцев с 25 августа 2017 г., а срок наблюдения — три месяца после последнего облучения. Все 20 добровольцев, включенных в исследование, были мужчинами, средний возраст которых составлял 33,7 (26–43) года. На рис. 1 представлена ​​диаграмма CONSORT для потока участников в исследовании.

Процедуры

Оборудование для облучения UVC.

Были использованы эксимерная лампа на основе криптона-хлорида (Kr-Cl) и оптический фильтр, ограничивающий спектр излучения света в диапазоне от 200 до 230 нм с максимальной длиной волны излучения 222 нм (рис. 2). Устройство SafeZoneUVC с излучением 222 нм (Ushio Inc., Токио, Япония), которое было недавно разработано и подготовлено для этого испытания, состоит из лампы, вентилятора воздушного охлаждения, зеркал и специального полосового фильтра (рис. ).

Фильтр используется для блокировки почти всех длин волн, за исключением доминирующей длины волны излучения 222 нм.Энергия излучения, излучаемая светом с длиной волны 222 нм, была измерена с помощью накопительного УФ-измерителя S-172 / UIT250 (Ushio Inc.) и составила 5,5 мВт / см ² .

Метод УФ-облучения.

Область спины здоровых субъектов облучали на участке между третьим грудным позвонком и 12-м грудным позвонком, где макроскопически не наблюдались аномалии кожи. Предлагаемое в настоящее время УФ-излучение с длиной волны 222 нм никогда не применялось у людей; поэтому необходимо изучить соответствующую дозу облучения, которая может продемонстрировать безопасность и достаточный бактерицидный эффект.Принимая во внимание, что минимальная доза эритемы 254-нм УФС составляет 10 мДж / см ² , 500 мДж / см ² была установлена ​​как максимальная достаточная доза облучения. В случае, если появление эритемы наблюдается при 500 мДж / см ² или меньше на этапе 1, максимальная доза облучения, при которой не появляется эритема, устанавливается как доза облучения на этапе 2 данного исследования. Участки облучения доз были расположены отдельно друг от друга, чтобы избежать многократного облучения одной и той же области в ходе этого исследования.

Шаг 1–1: Тест на эритему с меньшими дозами.

UVC 222 нм при 50, 100 и 200 мДж / см ² облучали, и через 24 часа проверяли наличие или отсутствие эритемы. По сравнению с необлученными участками, если на облучаемом участке наблюдаются едва заметные изменения, констатируется наличие эритемы. Об этом судили два или более врачей, и результат считался положительным в отношении эритемы, даже если таковой был оценен одним врачом.

Шаг 1–2: Тест на эритему с более высокими дозами.

В случаях, когда эритема не наблюдалась на этапах 1–1, УФС с длиной волны 222 нм при 300, 400 и 500 мДж / см облучали ² , а наличие или отсутствие эритемы исследовали через 24 часа. Максимальная доза, которая вызвала эритему у участника, была определена как минимальная доза эритемы (MED), которая представляет собой наименьшую дозу радиации, которая может вызвать слабую, но легко различимую эритему. На основании самого низкого MED среди всех участников была определена доза на этапе 2, как показано в таблице 2.

Шаг 2.

Облучение максимальной дозой, не вызывающей эритемы на Шаге 1, было выполнено для всех участников. Мазок с кожи собирали до облучения, а также через 5 и 30 минут после него и отправляли на исследование культуры. Кожную ткань облученного участка собирали в течение 1 часа после облучения с помощью биопсии под местной анестезией; кроме того, ДНК экстрагировали из клеток кожи для измерения образовавшегося димера циклобутанпиримидина (CPD) с помощью иммуноферментного анализа (ELISA) в качестве индикатора повреждения ДНК.

Посев из мазков с кожи.

Кожу в облученной области соскребали тампоном (Pro-media st-25. Elmex Co., Ltd. Tokyo, Japan.), И разбавитель тампона полностью фильтровали через смешанный эфир целлюлозы с размером пор 0,45 мкм. мембрана (фильтрующая установка EZ-Fit, Merck, Дармштадт, Германия). Отфильтрованную мембрану помещали на поверхность агара для переваривания казеина соевых бобов (Nissui Pharmacy, Tokyo, Japan) в пластиковой посуде и инкубировали при 37 ° C в течение 24 часов. Количество колоний, образовавшихся в чашках, подсчитывали макроскопически.Применяли мембранную фильтрацию, так как ожидалось, что количество собранных бактерий может быть слишком маленьким, чтобы их можно было обнаружить тампоном с узкого участка кожи.

Биопсия кожи.

Под местной анестезией кожную ткань собирали с помощью трепана диаметром 3 мм для биопсии (BP-30F, Kai Industries Co., Ltd. Tokyo, Japan) и быстро замораживали.

Сбор ДНК и ELISA для CPD . Сбор геномной ДНК из ткани биопсии проводили с использованием набора QIAamp Blood Kit (QIAGEN, Hilden, Германия.Кот. № 51104) в соответствии с инструкциями производителя. Образец геномной ДНК был отправлен в Cosmo Bio Inc., где количество продуцированного CPD было измерено с помощью набора High Sensitivity CPD / Cyclobutane Pyrimidine Dimer ELISA, версия 2 (Cosmo Bio Inc., Токио, Япония. Кат. № NM-MA-K003) сравнивали среди группы облучения, группы без облучения, положительного контроля и отрицательного контроля. Положительный контроль представлял собой ДНК тимуса теленка, облученную УФС с длиной волны 254 нм с концентрацией 1 мДж / см ² , тогда как отрицательный контроль представлял собой необлученную ДНК тимуса теленка.

Сбор данных

Первичным результатом было наличие или отсутствие эритемы кожи через 24 часа после завершения 222-нм УФ-облучения 500 мДж / см. ² или меньше. Вторичные результаты включали наличие или отсутствие эффекта стерилизации местных бактерий кожи при облучении УФС 222 нм, наличие или отсутствие повреждения ДНК в клетках кожи после УФ-облучения и побочные эффекты.

Облученные участки обследовали не менее чем через три месяца после облучения.

Примерный размер выборки

Это первое исследование подобного типа, проводимое на людях, и нет никаких справочных материалов для статистической оценки размера выборки. Таким образом, целевое количество случаев было установлено на уровне 20, чтобы обеспечить широкий набор показателей безопасности и эффективности. Поскольку это исследование является предварительным для будущих исследований, мы установили такой критерий, что этот метод облучения считается достаточно безопасным, когда нижний предел 95% доверительного интервала для эритемы превышает 75%.Когда эритема не наблюдается у всех 20 участников, нижний предел 95% доверительного интервала составляет 83,2%.

Статистический анализ

Анализ безопасности.

Для исследования эритемы была оценена доля эритемы, вызванной УФ-излучением 222 нм, и ее доверительный интервал 95%. При оценке повреждения ДНК количество CPD, генерируемых на 222-нм УФС-облученных и необлученных областях каждого участника, было измерено и статистически проанализировано с использованием парного t-критерия.Другие пары данных были статистически проанализированы с использованием непарного t-критерия. Уровень значимости проверки гипотезы был двусторонним 5%.

Анализ эффективности.

Частота обнаружения бактерий с помощью мазков с кожи сравнивалась и исследовалась с использованием критерия ранговых знаков Вилкоксона. Уровень значимости проверки гипотезы был двусторонним 5%.

Результаты

Облучение UVC с длиной волны 222 нм и интенсивностью 500 мДж / см не вызывает эритемы

На этапе 1 (тест на эритему) эритема не наблюдалась у всех 20 участников при всех дозах (50–500 мДж / см ² ) УФ-излучения 222 нм (0%, 95% доверительный интервал [от 0% до 16 .8%]). Исходя из этого результата, для шага 2 использовалась доза 500 мДж / см ² .

УФ-излучение с длиной волны 222 нм оказывает бактерицидное действие на кожу человека

Во всех 20 наборах образцов один набор был случайно отброшен до подсчета количества колоний. Таким образом, оценка проводилась на выборках из 19 участников. Количество колоний на мембране было значительно ниже в культурах мазков с кожи через 5 и 30 минут после облучения, чем в культуре мазков из кожи до облучения (рис. 4).

Рис. 4. Число бактериальных колоний в суспензии культивированных мазков с кожи.

Среднее количество и стандартное отклонение колоний, образовавшихся до облучения, через 5 минут после облучения и 30 минут после облучения составили 7,21 ± 7,48, 0,05 ± 0,23 и 0,79 ± 2,53, соответственно. Каждые данные показаны черным пятном, а отдельные пары данных соединены линиями. Количество колоний значительно уменьшалось при облучении UVC 222 нм через 5 и 30 минут после облучения, чем при предварительном облучении.Не наблюдалось значительной разницы в количестве колоний между культурами мазков с кожи через 5 и 30 минут после облучения. Аббревиатура: UVC, ультрафиолетовое излучение C.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0235948.g004

Количество CPD при облучении UVC было немного выше, чем без облучения

Количество продуцируемого CPD оценивали и сравнивали для облученной области, необлученной области, отрицательного контроля и положительного контроля.По сравнению с положительным контролем, количество CPD в трех других группах было значительно ниже. Количество CPD, продуцируемого в облученной области, было немного, но статистически значимо выше, чем в необлученной области и отрицательном контроле (рис. 5).

Рис. 5. Количество CPD, оцененное с помощью ELISA.

Поглощение на длине волны 492 нм пропорционально количеству CPD. Среднее значение поглощения и стандартное отклонение положительного контроля, облученных образцов, необлученных образцов и отрицательного контроля составило 3.09 ± 0,07, 0,25 ± 0,05, 0,17 ± 0,04 и 0,14 ± 0,02 соответственно. Все данные показаны черным пятном. Показано, что оптическая плотность положительного стандарта была значительно выше, чем у трех других образцов, а оптическая плотность облученной области была значительно выше, чем оптическая плотность необлученной зоны и отрицательного контроля. Не наблюдалось существенной разницы между необлученной областью и отрицательным контролем. Сокращение: ИФА, иммуноферментный анализ.

https: // doi.org / 10.1371 / journal.pone.0235948.g005

Трехмесячное макроскопическое наблюдение после облучения

Последующая оценка через 3 месяца после облучения показала, что у всех участников не наблюдалось кожных симптомов, включая эритему. Точно так же не было отмечено никаких побочных эффектов.

Обсуждение

Для клинического применения 222-нм УФ-излучения на хирургической ране для профилактики ИОХВ необходимо исследование безопасности и эффективности этого метода.Это исследование было проведено с использованием нормальной кожи человека на первом этапе перед применением метода к хирургической ране для его клинического применения. Насколько нам известно, это первое исследование, посвященное изучению безопасности и бактерицидного эффекта 222-нм UVC у людей. В этом исследовании тест на эритему продемонстрировал, что облучение UVC 222 нм при 500 мДж / см ² или менее не вызывает эритемы, что указывает на то, что эта доза облучения меньше, чем доза, которая может вызвать солнечный ожог. Тест мазка с кожи проводили через 5 и 30 минут после облучения, и культуру мазка в эти моменты времени сравнивали с мазком с кожи необлученной области.Обе временные точки показали значительно меньшее количество колоний, чем в необлученной области, что указывает на то, что УФ-излучение 222 нм при 500 мДж / см ² оказывает бактерицидное действие на кожу человека, которое длится не менее 30 минут после облучения. Объединение результатов тестов на покраснение и мазок с кожи показало, что доза 222-нм UVC без солнечных ожогов может безопасно стерилизовать кожу.

О бактерицидном действии УФС известно давно. Фактически, УФС использовался как бактерицидная лампа.Облучатели UVC с длиной волны 254 нм клинически используются в США и Канаде для лечения пролежней с инфекцией. Одновременно, поскольку UVC цитотоксичен, есть опасения, что могут развиться злокачественные опухоли, такие как меланома и заболевания глаз (например, кератит) [14,16]. Исходя из этого, мы сочли, что длина волны УФС 222 нм безопасна для облучения кожи человека. Это означает, что, поскольку можно безопасно облучать больше доз УФС с длиной волны 222 нм, облучение УФС с длиной волны 222 нм предположительно является более мощным.

Безопасность 222-нм UVC была исследована в экспериментах на животных, проведенных другими организациями. Buonanno et al. выполнили облучение безволосых мышей 254- и 222-нм UVC при 157 мДж / см ² и оценили генерируемые CPD и 6–4 фотопродукта как маркеры повреждения ДНК. Результат исследования показал, что генерация CPD и 6–4 фотопродуктов наблюдалась исключительно после облучения UVC с длиной волны 254 нм с подтверждением повреждения ДНК [17]. В другом предыдущем исследовании аналогичным образом сообщалось, что даже хроническое облучение ультрафиолетовым излучением 222 нм при 450 мДж / см ² / день в течение всего 10 дней не вызывало повреждений ДНК у мышей [18].

Эти данные указывают на безопасность УФ-облучения 222 нм на области с роговым слоем. Однако, чтобы применить этот метод для профилактики ИОХВ, облучение следует проверить на области без рогового слоя, например, на участках общего хирургического вмешательства. Клетки человека имеют размер 5–25 мкм, тогда как размер бактерий составляет 1 мкм или меньше. Ранее сообщалось, что 157 мДж / см ² 222-нм UVC не достигает ядра человека, тем самым не вызывая повреждения ДНК [17,19,20].Следовательно, облучение раны без рогового слоя ультрафиолетовым излучением 222 нм теоретически считается безопасным.

Облучение раны без рогового слоя было изучено Narita et al. Фотогенотоксичность ядра клетки с использованием CPD в качестве маркера после 500 мДж / см ² 222-нм UVC на нормальной коже и области без эпидермиса была исследована и сравнена с таковой в случае облучения UVC 254 нм [ 21]. Результаты экспериментов показали, что CPD не обнаруживался после облучения UVC 222 нм при 500 мДж / см ² на нормальной коже и что CPD обнаруживался в 60% кератиноцитов после облучения UVC 254 нм.Более того, CPD был обнаружен в 80% фибробластов через 1 час после облучения УФС 254 нм; напротив, CPD не был обнаружен после облучения ран без эпидермиса с помощью УФС с длиной волны 222 нм 500 мДж / см ² .

Хотя в предыдущих исследованиях с участием животных сообщалось, что облучение UVC 222 нм не вызывало CPD, ELISA в этом исследовании показал небольшое, но статистически значимое увеличение CPD в облученной области, чем в необлученной. Это расхождение в результатах могло быть связано с различиями в видах, использованных в качестве испытуемых, и в дозах УФ-излучения 222 нм.Более того, основной причиной расхождения предположительно были разные методы оценки НПР, использованные в этом и предыдущих исследованиях. Предыдущие исследования выполняли гистологическую оценку для оценки CPD, тогда как в этом исследовании использовался ELISA. Предполагается, что ELISA более чувствителен, чем гистологическая оценка, для обнаружения генерации CPD. По оценкам, генерация CPD в клетках кожи человека происходит ежедневно, особенно при нахождении на открытом воздухе в течение 20 минут в солнечный день, как сообщалось ранее [22]; следовательно, создание CPD не обязательно указывает на то, что деятельность является вредной, при условии, что она находится в пределах ремонтопригодности.В этом исследовании CPD был незначительно обнаружен в человеческом ELISA. Однако, учитывая свойство UVC 222 нм на клетках человека, теоретически предполагается, что образование CPD происходит в верхнем слое эпидермиса [13,17,19,20]. В этом исследовании ELISA выявил, что значение CPD, полученное путем вычитания значения CPD отрицательного контроля из значения CPD после облучения UVC 222 нм при 500 мДж / см ² , составляет всего 3,5% от значения CPD положительного контроля. Предыдущее исследование с использованием данных гистохимии, а не данных ELISA, показало, что облучение УФС с длиной волны 254 нм при 150 мДж / см ² на искусственной коже и при 157 мДж / см ² на коже мыши индуцировало продукцию CPD в 50 % и 52.3% кератиноцитов соответственно [17]. Более того, в другом исследовании сообщалось, что экспрессирующие CPD клетки в кератиноцитах составляют примерно 60% после 254-нм УФ-облучения при 150 мДж / см ² на коже мышей [21]. По сравнению с обнаруженным количеством CPD после облучения UVC 254 нм в этих исследованиях, количество, генерируемое облучением UVC 222 нм в этом исследовании, было заметно низким, несмотря на высокую дозу облучения, даже если предположить, что положительный контроль этого отчета дает 100% CPD в кератиноцитах . В этом исследовании, хотя было невозможно выполнить гистологическую оценку с образцами человека, мы получили данные гистологических исследований по локализации CPD в другой серии исследований [23].Для клинического применения этого метода профилактики ИОХВ необходимо провести исследование на животных, в котором изучается безопасность УФ-излучения 222 нм на модели хирургической раны.

Выводы

Облучение UVC 222 нм 500 мДж / см ² безопасно и оказывает бактерицидное действие на кожу человека. Ожидается, что это будет новый метод профилактики SSI в клинических условиях.

Благодарности

Авторы благодарны г-же М. Ясуда (отделение ортопедической хирургии, Высшая школа медицины Университета Кобе) за ее техническую помощь и биостатистам из Центра клинических и трансляционных исследований больницы Университета Кобе за ценные советы относительно статистического анализа.Авторы хотели бы поблагодарить Editage (www.editage.jp) за редактирование на английском языке.

Ссылки

1. 1. Янг Х.Л., Риз С., Неппер Б., Миллер А., Мофри С., Прайс С.С. Влияние продуктов для предоперационной подготовки кожи на инфекцию области хирургического вмешательства. Инфекционный контроль Hosp Epidemiol. 2014. 35 (12): 1535–1538. pmid: 25419777
2. 2. Битковер CY, Marcusson E, Ransjo U. Распространение коагулазонегативных стафилококков во время операций на сердце в современной операционной.Ann Thorac Surg. 2000. 69 (4): 1110–1115. pmid: 10800802
3. 3. Таммелин А., Хамбреус А., Штал Э. Медиастинит после кардиохирургии: улучшение бактериологической диагностики за счет использования нескольких образцов тканей и типирования штаммов. J Clin Microbiol. 2002. 40 (8): 2936–2941. pmid: 12149355
4. 4. Skramm I, Fossum Moen AE, Aroen A, Bukholm G. Инфекции в области хирургического вмешательства в ортопедической хирургии демонстрируют клоны, аналогичные таковым в носовых носителях ортопедического золотистого стафилококка.J Bone Joint Surg Am. 2014. 96 (11): 882–888. pmid: 24897735
5. 5. Венцель Р.П., Perl TM. Значение носительства Staphylococcus aureus через нос и частота послеоперационной раневой инфекции. J Hosp Infect. 1995. 31 (1): 13–24. pmid: 7499817
6. 6. Манграм А.Дж., Хоран Т.С., Пирсон М.Л., Сильвер LC, Джарвис В.Р. Руководство по профилактике инфекций в области хирургического вмешательства, 1999 г. Консультативный комитет по практике инфекционного контроля в больницах. Инфекционный контроль Hosp Epidemiol. 1999. 20 (4): 250–278; викторина 79–80.pmid: 10219875
7. 7. Александр JW, Соломкин JS, Эдвардс MJ. Обновленные рекомендации по контролю инфекций в области хирургического вмешательства. Ann Surg. 2011. 253 (6): 1082–1093. pmid: 21587113
8. 8. Бинцис Т., Литопулу-Цанетаки Э., Робинсон Р.К. Существующие и потенциальные применения ультрафиолетового света в пищевой промышленности — критический обзор. J Sci Food Agric. 2000. 80 (6): 637–645. pmid: 29345786
9. 9. Риттер М.А., Ольбердинг Е.М., Малинзак Р.А. Ультрафиолетовое освещение во время ортопедических операций и скорость заражения.J Bone Joint Surg Am. 2007. 89 (9): 1935–1940. pmid: 17768189
10. 10. Нуссбаум Е.Л., Флетт Х., Хитциг С.Л., МакГилливрей С., Лебер Д., Моррис Х. и др. Ультрафиолетовое облучение при лечении пролежней у людей с травмой спинного мозга: рандомизированное плацебо-контролируемое исследование. Arch Phys Med Rehabil. 2013. 94 (4): 650–659. pmid: 23246896
11. 11. Thai TP, Houghton PE, Кэмпбелл KE, Woodbury MG. Ультрафиолетовый свет C в лечении хронических ран с помощью MRSA: тематическое исследование.Обработка стомной раны. 2002. 48 (11): 52–60. pmid: 12426452
12. 12. Thai TP, Keast DH, Campbell KE, Woodbury MG, Houghton PE. Влияние ультрафиолетового света C на бактериальную колонизацию хронических ран. Обработка стомной раны. 2005. 51 (10): 32–45. pmid: 16230765
13. 13. Kreusch S, Schwedler S, Tautkus B, Cumme GA, Horn A. УФ-измерения в микропланшетах, подходящих для высокопроизводительного определения белка. Анальная биохимия. 2003. 313 (2): 208–215. pmid: 12605857
14. 14.Pfeifer GP, Besaratinia A. Зависящее от длины волны УФ-излучение повреждение ДНК и немеланома и рак кожи человека. Photochem Photobiol Sci. 2012; 11 (1): 90–97. pmid: 21804977
15. 15. Понная Б., Буонанно М., Велч Д., Шуряк И., Рандерс-Пехрсон Г., Бреннер Д. Дальний ультрафиолетовый свет предотвращает инфицирование MRSA поверхностных ран in vivo. PLoS One. 2018; 13 (2): e0192053. pmid: 29466457
16. 16. Ковальчук С.И., Пристнер М.С., Пирсон А.Дж., Сондерс Р.Д., Буффлер С.Д. Зависимость клеточных ответов в меланоцитах и ​​клетках меланомы человека от длины волны после воздействия ультрафиолетового излучения.Int J Radiat Biol. 2006. 82 (11): 781–792. pmid: 17148262
17. 17. Буонанно М., Понная Б., Велч Д., Станислаускас М., Рандерс-Пехрсон Г., Смиленов Л. и др. Бактерицидная эффективность и безопасность для кожи млекопитающих УФ-излучения с длиной волны 222 нм. Radiat Res. 2017; 187 (4): 483–491. pmid: 28225654
18. 18. Нарита К., Асано К., Моримото Ю., Игараси Т., Накане А. Хроническое облучение ультрафиолетовым светом 222 нм не вызывает ни повреждения ДНК, ни эпидермальных повреждений кожи мышей даже при высоких дозах. PLoS One.2018; 13 (7): e0201259. pmid: 30044862
19. 19. Буонанно М., Станислаускас М., Понная Б., Бигелоу А.В., Рандерс-Пехрсон Г., Сюй Й. и др. Ультрафиолетовый свет 207 нм — многообещающий инструмент для безопасного и недорогого снижения инфекций в области хирургического вмешательства. II: Исследования безопасности in vivo. PLoS One. 2016; 11 (6): e0138418. pmid: 27275949
20. 20. Велч Д., Буонанно М., Гриль В., Шуряк И., Крикмор С., Бигелоу А.В. и др. Дальний ультрафиолетовый свет C: новый инструмент для борьбы с распространением микробных заболеваний, передающихся воздушно-капельным путем.Sci Rep.2018; 8 (1): 2752. pmid: 29426899
21. 21. Нарита К., Асано К., Моримото Ю., Игараси Т., Хамблин М.Р., Дай Т. и др. Дезинфекция и заживляющие эффекты 222-нм УФ-света на метициллин-резистентную инфекцию золотистого стафилококка в ранах мышей. J Photochem Photobiol B. 2018; 178: 10–18. pmid: 29101868
22. 22. Дель Бино С., Бернерд Ф. Вариации цвета кожи и биологические последствия воздействия ультрафиолетового излучения. Br J Dermatol. 2013; 169 Прил. 3: 33–40.
23. 23. Ямано Н., Кунисада М., Кайдзу С., Сугихара К., Нисиаки-Савада А., Охаши Х. и др. Долгосрочное воздействие стерилизующих ламп ультрафиолетового излучения с длиной волны 222 нм на мышей, чувствительных к ультрафиолетовому излучению. Photochem Photobiol. 2020 29 марта. Онлайн в преддверии печати. pmid: 32222977

ЗУБР закрытый ультрафиолетовый бактерицидный рециркулятор (установка воздушной стерилизации)

Роспотребнадзором изданы Методические рекомендации No.MR 3.1 / 2.3.5.0191-20 «Рекомендации по профилактике новой коронавирусной инфекции (COVID-19) на предприятиях торговли». Меры безопасности, перечисленные в этих рекомендациях, включают применение рециркулирующих бактерицидных облучателей воздуха, разрешенных для работы в присутствии людей и животных, в помещениях постоянного присутствия сотрудников и посетителей.

Учитывая рекомендации Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека по предотвращению распространения новой коронавирусной инфекции (COVID-19), Производственная группа Ремер разработала, протестировала и сертифицировала Ультрафиолетовый бактерицидный рециркулятор закрытого типа ЗУБР (стерилизующий воздух). ед.) торговой марки Rem в короткие сроки.

· Офисные помещения

· Дошкольные и образовательные учреждения

· Помещения для развлекательных мероприятий

· Магазины и торговые центры

· Тренажерные залы и фитнес-клубы

· Салоны красоты

· Помещения предприятий общественного питания

· Квартиры и частные дома

· Производственные помещения

· банки

· Профилактические и лечебные учреждения

· Гостиницы и хостелы

· Автосалоны и автосервисы

Ультрафиолетовый бактерицидный рециркулятор закрытого типа ЗУБР предназначен для горизонтального или вертикального настенного монтажа возле систем отопления, дверных и оконных проемов, чтобы обеспечить беспрепятственный приток и вытяжку воздуха.Обеззараживание потока воздуха происходит при его принудительной циркуляции по внутреннему пространству тела. Внутренняя часть устройства содержит безозоновые бактерицидные УФ-лампы. Воздух, нагнетаемый вентилятором, проходит внутрь корпуса устройства и подвергается воздействию УФ-излучения, что приводит к его стерилизации.

Бактерицидный рециркулятор ЗУБР прост в использовании. Устройство компактное и легкое, бесшумный вентилятор и закрытый корпус обеспечивают незаметную работу.

Ультрафиолетовый бактерицидный рециркулятор закрытого типа ЗУБР — отличный стерилизатор воздуха для профилактики гриппа, ОРВИ, ОРЗ, дифтерии, туберкулеза и многих других заболеваний. Устройство отлично подходит для борьбы с вирусами, бактериями (стафилококки, энтерококки, кишечные палочки), нарушая их ДНК и приводя к их неспособности выполнять свои жизненно важные функции. Если в помещении присутствует носитель инфекции, установка значительно снизит риск заражения окружающих.

Внимание!

Помните, что постоянная дезинфекция жилых помещений вредна для иммунитета, особенно детского. Более того, некоторые микроорганизмы способны мутировать и становиться устойчивыми к ультрафиолету. Согласно рекомендациям, в помещениях постоянного присутствия сотрудников следует использовать не только рециркуляционные бактерицидные облучатели воздуха, но и проветривать помещение каждые 2 часа.

Новинка доступна для заказа у наших партнеров с августа 2020 года.

Бактерицидная активность и восстанавливающий эффект гидроксильных радикалов, генерируемых ультрафиолетовым облучением и нанесением ионов серебра на инфицированную поверхность титана

Бактериальные культуры

Два вида бактерий полости рта, Streptococcus mutans JCM5705 (Центр биологических ресурсов RIKEN, Вако, Япония) и В этом исследовании использовали Aggregatibacter actinomycetemcomitan s JCM2434 (RIKEN BioResource Center, Wako, Japan). Культуры выращивали анаэробно с использованием AneroPack (Mitsubishi Gas Chemical Company, Токио, Япония) в бульоне для инфузии мозга и сердца (BHI) (Becton Dickinson Labware, Franklin Lakes, Нью-Джерси, США) или бульоне BHI с 10 г / л дрожжевого экстракта (BHI). -YE) (Oxoid, Хэмпшир, Великобритания) при 37 ° C в течение 24 часов.Приготовленная бактериальная суспензия была разбавлена ​​стерильным физиологическим раствором и содержала приблизительно 1 × 10 ⁸ колониеобразующих единиц (КОЕ) / мл, в соответствии с нашим предыдущим отчетом ³⁵ . Для теста на биопленку бактериальную суспензию высевали на титановую поверхность или пластиковую лунку и инкубировали в BHI-YE для Aggregatibacter actinomycetemcomitans или BHI с 1% сахарозой (Kanto chemical, Япония) (BHI-S) для стрептококка . mutans при 37 ° C в течение 24 ч в анаэробных условиях.

Обработка поверхности титаном

Диски из технически чистого титана (диаметр, 5 мм: толщина, 2 мм: класс 4; TB550, Нишимура, Фукуи, Япония) были подвергнуты пескоструйной очистке и кислотному травлению в соответствии с нашим предыдущим отчетом ³⁷ , чтобы получить шероховатую поверхность, похожую на обычно используемые коммерческие зубные имплантаты Вкратце, пескоструйную очистку проводили с частицами оксида алюминия 250 мкм при давлении струи 0,4 МПа. Образцы подвергали кислотному травлению в 49% -ной серной кислоте в течение 1 ч при 60 ° C и очищали ультразвуком в ультрачистой воде (10 минут), ацетоне (10 минут) и, наконец, ультрачистой воде (10 минут).После очистки образцы автоклавировали 15 мин при 121 ° C. Образцы готовили за 1 день до использования и хранили в сверхчистой воде.

Бактерицидный анализ

Создание протокола для определения лечебного эффекта

Приготовленную бактериальную суспензию (100 мкл; конечная концентрация 10 ⁷ КОЕ / мл) смешивали со 100 мкл раствора нитрата серебра (40 мкМ) в 96-луночном планшете для культивирования клеток. После перемешивания образец облучали УФ-А светом (Omnicure LX400 +; Lumen Dynamics, Япония) при интенсивности облучения 1000 мВт / см ² в течение 1 мин.Прореагировавший раствор разбавляли в 2 раза сверхчистой водой, 10% хлоридом натрия (NaCl) (Wako, Япония), 10% раствором альбумина (Wako, Япония) или 10-кратным бульоном Мюллера-Хинтона (MHB) (BBL Brain Heart Infusion). , BD, США), чтобы остановить бактерицидное действие остаточных ионов серебра. Раствор MHB готовили следующим образом: 370 г порошка BHI растворяли в 1 л сверхчистой воды и автоклавировали в течение 15 минут при 121 ° C, а затем выдерживали в течение 1 часа при комнатной температуре. Эти группы были обозначены как «Ag (+) L (+) UW», «Ag (+) L (+) 10% NaCl», «Ag (+) L (+) 10% альбумин» и «Ag (+) ) L (+) MHB ”соответственно.В качестве контроля бактериальную суспензию смешивали с ультрачистой водой и инкубировали в черном ящике в течение 1 мин, затем разбавляли в 2 раза сверхчистой водой и обозначали как «Ag (-) L (-) UW». Затем обработанный раствор разбавляли в 10–10 ⁵ раз физиологическим раствором, после чего 10 мкл разбавленного раствора высевали на агар BHI (Oxoid, Basingstoke, UK) для определения эффекта лечения. Чашки с агаром культивировали в анаэробных условиях при 37 ° C в течение 48 ч с последующим подсчетом колоний для определения КОЕ / мл.

Бактериальная суспензия

На этом этапе 100 мкл приготовленной бактериальной суспензии смешивали со 100 мкл различных концентраций раствора нитрата серебра (100, 200, 400, 800, 1200, 1600 и 2000 мкМ) или сверхчистой воды в 96-луночный планшет для культивирования клеток. Конечные концентрации растворов нитрата серебра составляли 50, 100, 200, 400, 600, 800 и 1000 мкМ (8,5, 17,0, 33,97, 67,9, 101,9, 135,9 и 169,8 м.д. соответственно). Конечная концентрация бактериальной суспензии составляла 10 ⁷ КОЕ / мл.После перемешивания образец облучали УФ-А светом (365 нм) (Omnicure LX400 +; Lumen Dynamics, Япония) при интенсивности излучения 1000 мВт / см ² или выдерживали в светозащитном боксе в течение 1 мин. Образцы были разделены на 4 группы в зависимости от метода лечения следующим образом; Ag (+) L (+): смешивание раствора нитрата серебра и бактериальной суспензии с последующим облучением УФ-А светом, Ag (+) L (-): смешивание раствора нитрата серебра и бактериальной суспензии с последующей инкубацией в светозащитном боксе, Ag (-) L (+): смешивание сверхчистой воды и бактериальной суспензии с последующим облучением УФ-А светом, Ag (-) L (-): смешивание сверхчистой воды и бактериальной суспензии с последующей инкубацией в светозащитном боксе.Прореагировавший раствор разбавляли в 2 раза 10-кратным раствором MHB. Окончательно оценивали КОЕ / мл подсчетом колоний через 48 ч, как описано выше. Также оценивали исходное количество бактерий (размер посевного материала).

Для определения механизма, лежащего в основе бактерицидного эффекта комбинированной обработки нитратом серебра и УФ-А облучения, 100 мкл приготовленной бактериальной суспензии смешивали со 100 мкл раствора нитрата серебра (конечная концентрация; 400 мкМ [33,97 ppm]) с 1.4 M диметилсульфоксид (ДМСО) в качестве поглотителя активных форм кислорода или сверхчистой воды в 96-луночном планшете для культивирования клеток. После перемешивания образец облучали УФ-А светом с интенсивностью излучения 1000 мВт / см ² или выдерживали в светозащитном боксе в течение 1 мин. Затем прореагировавший раствор подвергали тому же протоколу. Все тесты проводились как 3 независимых анализа.

Биопленка на поверхности титана

Биопленка на поверхности титана была приготовлена, как описано выше.Культурный раствор приготовленной биопленки удаляли, а титан дважды промывали PBS. После удаления PBS титановую пластину очищали пластиковым наконечником для ультразвукового скалера (Varios V-P10; Nakanishi, Япония) с использованием ультразвукового скейлера (Varios 970; Nakanishi, Япония) в течение 1 мин. Затем титановую пластину погружали в 500 мкл 1000 мкМ (169,8 ppm) раствора нитрата серебра и орошали УФ-А светом при интенсивности излучения 1000 мВт / см ² или выдерживали в светозащитном боксе в течение 1 мин.Эти группы были обозначены как «Ag (+) L (+)» или «Ag (-) L (+)» соответственно. Обработанную титановую пластину дважды промывали PBS и инкубировали в 300 мкл смеси коллагеназы типа I (4 мг / мл; Thermo Fisher Scientific, Япония) и Disperse (2 мг / мл; Thermo Fisher Scientific, Япония) в течение 2 часов. при встряхивании культура при 37 ° C для удаления оставшихся бактерий с поверхности титана. Затем 250 мкл прореагировавшего раствора высевали на агар BHI и культивировали при 37 ° C в течение 48 часов с последующим подсчетом колоний для определения значения КОЕ / мл.В качестве контрольной группы инфицированный титан погружали в сверхчистую воду на 1 мин и подвергали той же процедуре. Эта группа была обозначена как «Ag (-) L (-)». Экстрагированный раствор разбавляли в 10 раз стерильным физиологическим раствором, а затем 10 мкл разбавленного раствора высевали на агар BHI.

Наблюдение с помощью сканирующего электронного микроскопа

Титановые диски и биопленка были приготовлены, как описано выше. Подготовленную биопленку на титановом столе подвергали ультразвуковому скейлингу с помощью пластикового наконечника ультразвукового скейлера в течение 1 мин, после чего следовало погружение в 1 мМ раствор нитрата серебра при любом облучении УФ-А светом с интенсивностью 1000 мВт / см ² или инкубация в светозащитном боксе в течение 1 мин; эти группы были обозначены как «Ag (+) L (+)» и «Ag (+) L (-)» соответственно.В качестве контрольной группы приготовленную биопленку на титановом столе погружали в 1 мМ раствор нитрата серебра и облучали УФ-А светом в течение 1 мин и обозначали как «Ag (+) L (+) без образования отложений». Для наблюдения за поверхностью титана обработанный титановый диск исследовали с помощью сканирующей электронной микроскопии (SEM; SU-5000; Hitachi, Япония) при 10 кВ после распыления углерод-палладиевого сплава.

Анализ образования гидроксильных радикалов

Бактериальная суспензия

Выход гидроксильных радикалов, образующихся при комбинированной обработке с нанесением ионов серебра и облучением УФ-А светом, анализировали с помощью метода спин-ловушки электронного парамагнитного резонанса (ЭПР), следуя ранее описанной опубликовано исследование ⁵⁸ .Вкратце, 75 мкл растворов нитрата серебра различной концентрации (100, 200, 400, 800, 1200, 1600, 2000 мкМ) или сверхчистой воды смешивали с 50 мкл 5,5-диметил-1-пирролина N -оксида. (DMPO) (Labotec, Токио, Япония) в лунке 96-луночного планшета и 75 мкл бактериальной суспензии S. mutans или A. actinomycetemcomitans , доведено до примерно 10 ⁸ КОЕ / мл. , был добавлен. Конечная концентрация нитрата серебра составляла 0, 37,5, 75, 150, 300, 450, 600 или 700 мкМ (6.4, 12,7, 25,5, 51,0, 76,4, 102,0 или 127,4 м.д. соответственно), а ДМПО — 75 мМ. Приготовленный раствор подвергали облучению УФ-А светом при интенсивности излучения 1000 мВт / см ² или инкубировали в светозащитном боксе в течение 1 мин. Каждый прореагировавший раствор анализировали на спектрометре ЭПР X-диапазона (JES-FA-100, JEOL, Токио, Япония) и записывали спектр ЭПР каждого образца. Концентрацию DMPO-OH (гидроксильные радикалы, захваченные DMPO) определяли с использованием программного обеспечения Digital Data Processing (JEOL).Тесты проводились как 3 независимых анализа.

Биопленка

Биопленки S. mutans или A. actinomycetemcomitans получали в 96-луночном пластиковом планшете для культивирования клеток, как описано выше. Супернатант приготовленной биопленки удаляли и добавляли 75 мкл сверхчистой воды, 75 мкл растворов нитрата серебра различных концентраций и 50 мкл DMPO (конечная концентрация 75 мМ). Конечная концентрация нитрата серебра составляла 0, 37,5, 75, 150, 300, 450, 600 или 700 мкМ (6.4, 12,7, 25,5, 51,0, 76,4, 102,0 или 127,4 частей на миллион). Смешанный раствор облучали УФ-А светом (интенсивность излучения: 1000 мВт / см ² ) или выдерживали в светозащитном боксе в течение 1 мин и подвергали той же процедуре.

Фракция бактериальных клеток

Фракция бактериальных клеток была приготовлена ​​в соответствии с отчетом Kumode et al . ⁵⁹ . Вкратце, бактериальные суспензии S. mutans или A. actinomycetemcomitans инкубировали в бульоне BHI или BHI-YE при 37 ° C в течение 24 часов.Приготовленную бактериальную суспензию центрифугировали при 13000 × g в течение 10 мин при 4 ° C. Супернатант удаляли, и осадок ресуспендировали в протопластном буфере (50 мМ Трис-HCl, 5 мМ EDTA, 5 мМ NaCl и 25% сахароза при pH 7,5) с последующим добавлением лизоцима (конечная концентрация 1 мг / кг). мл) и инкубировали при 37 ° C в течение 16 часов. Полученную бактериальную суспензию центрифугировали при 13000 × g в течение 10 мин при 4 ° C, и супернатант собирали как компонент клеточной стенки бактерий.Оставшийся осадок ресуспендировали в сверхчистой воде и центрифугировали при 13000 × g в течение 10 минут при 4 ° C, и супернатант собирали как компонент мембраны бактериальной клетки, а осадок собирали как цитоплазматический компонент. Все полученные компоненты лиофилизировали и ресуспендировали в сверхчистой воде. Смесь 75 мкл каждой клеточной фракции (10 мкг / мл), 75 мкл 2 мМ (339,6 ppm) раствора нитрата серебра и 50 мкл 75 мМ ДМПО облучали УФ-А светом (интенсивность облучения: 1000 мВт / см ² ) на 1 мин.Анализировали спектр ЭПР каждой приготовленной суспензии.

Биосовместимость

Клеточная цитотоксичность комбинации нанесения серебра и облучения УФ-А светом

Использовали линию остеобластных клеток мыши MC3T3-E1, предоставленную RIKEN Cell Bank (Цукуба, Япония). Клетки культивировали в колбе для клеточных культур с использованием среды Игла, модифицированной Дульбекко (D) (α-MEM; Nakalai Tesque, Киото, Япония) с добавлением 10% фетальной бычьей сыворотки (FBS; Thermo Fisher Scientific, Уолтем, Массачусетс, США), 100 Ед / мл пенициллина и 0.1 мг / мл стрептомицина (1% P / S; Wako Pure Chemicals Industries, Осака, Япония) при 37 ° C в атмосфере 5% CO ₂ . Клетки MC3T3E1 обрабатывали трипсином и высевали на обработанный титановый диск в 96-луночные планшеты с плотностью 5 × 10 ³ клеток на лунку. Планшеты инкубировали в течение ночи при 37 ° C в атмосфере 5% CO ₂ . Культуральную среду удаляли и промывали PBS. Затем по 100 мкл каждого раствора нитрата серебра с различной концентрацией (100, 200, 400, 800, 1200, 1600 и 2000 мкМ) добавляли в лунки и облучали УФ-А светом в течение 1 мин.Конечные концентрации растворов нитрата серебра составляли 50, 100, 200, 400, 600, 800 и 1000 мкМ. Затем реакционный раствор удаляли и добавляли 100 мкл свежей D-среды, и смесь инкубировали в течение 3 часов при 37 ° C в атмосфере 5% CO ₂ . Жизнеспособность клеток определяли с помощью анализа 3- (4,5-диметилтиазол-2-ил) -2,5-дифенилтетразолийбромида (МТТ; Sigma, Япония) в соответствии с нашим ранее опубликованным протоколом ⁶⁰ . Культуральную среду заменяли раствором МТТ (конечная концентрация 1 мг / мл) с последующей инкубацией в течение 1 ч при 37 ° C в атмосфере 5% CO ₂ .Раствор МТТ заменяли ДМСО с последующей инкубацией в течение 30 мин при комнатной температуре. Поглощение прореагировавшего раствора при 570 нм измеряли с помощью считывающего устройства для микропланшетов (Spectra MAX 190; Molecular Devices, Япония). В качестве контроля необработанные клетки MC3T3E1 с плотностью 5 × 10 ³ клеток на лунку погружали в сверхчистую воду в светозащитном боксе на 1 минуту. Сверхчистую воду удаляли и добавляли 100 мкл свежей D-среды, и клетки инкубировали в течение 3 часов при 37 ° C в атмосфере 5% CO ₂ .Поглощение клеток было нормализовано к контролю.

Анализ пролиферации клеток и анализ кальцификации клеток

Титановые диски и биопленку получали с использованием A. actinomycetemcomitans , как описано выше. Зараженный титановый стол подвергали ультразвуковой очистке в течение 1 мин с последующим погружением в 2 мМ (339,6 ppm) раствор нитрата серебра либо облучением УФ-А светом при 1000 мВт / см ² , либо инкубацией в светозащитном боксе. за 1 мин.Обработанные образцы титана промывали PBS и обозначали как группы «Ag (+) L (+)» и «Ag (+) L (-)» соответственно. В группе отрицательного контроля титановый стол очищали с помощью ультразвуковой очистки в течение 1 мин, погружали в сверхчистую воду, инкубировали в светозащитном боксе в течение 1 мин и называли «Ag (-) L (-)». Для группы положительного контроля был приготовлен незараженный титановый стол, обработанный без применения нитрата серебра и УФ-излучения, и назван контрольной группой.

Клетки MC3T3E1 обрабатывали трипсином и высевали на обработанный титановый диск в 48-луночные планшеты с плотностью 3 × 10 ⁴ клеток на лунку.Планшеты инкубировали при 37 ° C в атмосфере 5% CO ₂ в течение 3 дней для анализа пролиферации клеток или 28 дней для анализа кальцификации клеток. Пролиферацию клеток определяли с помощью МТТ-анализа. Кальцификацию клеток определяли окрашиванием ализарином красным. Один грамм ализарина красного S (Nacalai tesque, Япония) и 0,1 мл 28% раствора аммония (Nacalai tesque, Япония) разбавляли 100 мл сверхчистой воды. Оба приготовленных раствора смешивали, и pH доводили до 6,4. Клетки промывали PBS и фиксировали метанолом в течение 20 мин.После удаления метанола клетки достаточно промыли PBS с последующим добавлением 250 мкл приготовленного раствора ализарина красного при комнатной температуре в течение 30 мин. После удаления раствора ализаринового красного клетки достаточно промыли PBS и добавили 250 мкл 5% муравьиной кислоты при комнатной температуре с последующим встряхиванием в течение 10 минут. Затем отбирали аликвоты по 100 мкл для спектрофотометрического анализа с помощью считывающего устройства для микропланшетов с оптической плотностью при 415 нм.

Титановый винт (диаметр 1.6 мм: длина, 6,12 мм: Fukuoka Seimitu, Japan) подвергали пескоструйной очистке, травлению кислотой и автоклавированию, как описано выше. После образования биопленки из A. actinomycetemcomitans на титановом винте инфицированный титановый винт подвергали ультразвуковой обработке в течение 1 мин, после чего погружали в 2 мМ (339,6 ppm) раствор нитрата серебра. После этого смешанный раствор облучали УФ-А светом при интенсивности излучения 1000 мВт / см ² . В контрольной группе после пескоструйной обработки, кислотного травления и автоклавирования титановый винт хранился в сверхчистой воде без какой-либо бактериальной инфекции.

крыс линии Wistar (возраст 8 недель) использовали в этом эксперименте в соответствии с руководящими принципами по уходу и использованию лабораторных животных Университета Тохоку. Крыс анестезировали внутрибрюшинной инъекцией медетомидина (Domitor; 0,375 мг · кг массы тела ^-1 ; Nippon Zenyaku Kogyo, Япония), мидазолама (Sandoz; 2 мг · кг ^-1 массы тела; Sandoz, Япония) и тартрат буторфанола (Веторфал, 2,5 мг · кг ^-1 массы тела; Meiji Seika Co., Япония). После обрезания ноги крысы была разрезана кожа, окружающая большеберцовая кость, и мышца была очищена.После обнажения большеберцовой кости отверстие доступа (диаметр: 1 мм) было подготовлено с использованием VIVA ace (GC, Япония). Подготовленный титановый винт имплантировали в большеберцовую кость крыс со средним крутящим моментом 1,1 ± 0,2 сН · м. После имплантации кожа была жестко зашита для предотвращения инфицирования. Испытание на момент извлечения имплантированного титанового винта было выполнено с использованием Dejirache (№ GLK060, KTC, Япония) через 28 дней после операции. Все протоколы экспериментов на животных были рассмотрены и одобрены Институциональным комитетом по экспериментам на животных Университета Тохоку (номер разрешения: 2018DnA-044) перед началом экспериментов на животных.

Гистологическое наблюдение

Ткань, окружающая имплантаты, была извлечена и зафиксирована с использованием 4% глутарового альдегида. Образцы заключали в метилакрилатную смолу, разрезали на срезы 5-7 мкм после стандартизированных процедур дегидратации и инфильтрации и окрашивали гематоксилином и эозином (H-E). Подготовленные срезы просматривали под световым микроскопом.

Статистический анализ

Все данные представлены как средние значения ± стандартное отклонение (SD). Нормальное распределение данных было проверено с помощью теста Шапиро-Уилка.Поскольку данные были нормально распределены, статистическая значимость (p <0,05) каждого параметра для характеристики поверхности образцов титана и анализа пролиферации клеток оценивалась либо с помощью t-критерия Стьюдента для парных сравнений, либо с помощью однофакторного дисперсионного анализа (ANOVA). , за которым следует тест на достоверно значимую разницу Тьюки-Крамера для множественных сравнений с использованием SPSS (IBM, США).

Киевский филиал компании «Завет» на выставке MEDICA 2020 в Дюссельдорфе

Источник УФ — безозоновая бактерицидная лампа
Мощность лампы, Вт — 30
Количество бактерицидных ламп, шт — 10
Эффективный ресурс лампы, не менее, ч — 9000
Мощность УФ излучения, Вт — 119,4
Длина волны преобладающего излучения, нм — 253,7 нм
Производительность, м3 / ч — 1192
Мощность, Вт — 600
Напряжение, в стандартном настенном исполнении, В — ~ 220 + -10%
Область применения — медицинские учреждения, розничная торговля, офисные и учебные помещения, пищевая промышленность , дома, квартиры, фастфуд, автомобили и др.и др.
Тип установки — Стационарный
Способ установки — Настенный
Габаритные размеры, мм: (l * d * h) — 750 * 180 * 1380

Ультрафиолетовые бактерицидные рециркуляторы изготавливаются на сертифицированном производственном предприятии в соответствии с ISO 13485: 2016 и имеет сертификат CE.

Типы категорий помещений для использования рециркуляторов AEREXKS:
I. Операционные, предоперационные, родильные, стерильные помещения
II. Раздевалки, стерилизационные, палаты, кабинеты пациентов с ослабленным иммунитетом, реанимация, станции переливания крови, аптечные магазины
III.Палаты, кабинеты
IV. Детские игровые комнаты, школьные классы, воинские части, торговые центры, супермаркеты и магазины самообслуживания, офисные помещения
, банки и в непосредственной близости от рабочих мест, квартиры, государственные учреждения, общественные места, в том числе вокзалы и аэропорты
В. Курительные комнаты , общественные зоны, лестничные площадки, промышленность

Рекомендуемая площадь для дезинфекции помещений при H = 3м, м2
Категория I * — 65
II, III категории — 330
IV, V категории — 660

При использовании наших бактерицидных ультрафиолетовых лучей рециркулятор АЕРЕКС, каждому дарим наклейки с надписью — ЗОНА БАКТЕРИЦИДНОЙ БЕЗОПАСНОСТИ, которые позволят вашим клиентам, пассажирам или просто прохожим узнать, что ваше место — безопасно.

UVC / T-AR, бокс для УФ-очистки ДНК / РНК | Биосан

Ящик для УФ-очистки ДНК / РНК UVC / T-AR предназначен для чистых операций с образцами ДНК. Коробка для УФ-очистки обеспечивает защиту от загрязнения.

— настольная, изготовлена ​​из металлического каркаса, стенки из оргстекла и рабочая поверхность окрашены порошковой эмалью.

Ящики для УФ-очистки оснащены открытой УФ-лампой, установленной в верхнем кожухе. УФ-излучение от открытых ламп дезинфицирует рабочую зону, инактивируя фрагменты ДНК / РНК в течение 15–30 мин воздействия.Цифровой таймер контролирует продолжительность прямого УФ-излучения. Лампа дневного света обеспечивает правильное освещение рабочей поверхности.

УФ-очистителя оснащены проточным бактерицидным УФ-очистителем-рециркулятором AR, который обеспечивает постоянную дезинфекцию внутри ящика во время работы. Их рекомендуют для операций с ампликонами ДНК / РНК.

УФ-очиститель-рециркулятор AR состоит из УФ-лампы, вентилятора и пылевых фильтров, расположенных в специальном корпусе, так что пользователь, работающий с УФ-очистителем, защищен от УФ-излучения.Рециркулятор увеличивает максимальную плотность УФ-света, что делает его достаточно эффективным для инактивации ДНК / РНК. УФ-рециркулятор обрабатывает 100 объемов боксов для УФ-фильтров в час, создавая постоянные асептические условия работы внутри боксов для УФ-фильтров.

Специально предназначенные подвижные столы T-4 (с колесными замками) с выдвижным ящиком доступны по запросу.

Преимущества боксов для УФ-очистителя Biosan:

• Обеззараживание УФ-излучением высокой плотности без озона
• Долгоживущие УФ-лампы (в среднем 9000 часов)
• Автоматическое отключение УФ-ламп при открытии защитного экрана
• Бактерицидный рециркулятор проточного типа, обеспечивающий постоянную дезинфекцию внутри бокса УФ-очистителя во время работы
• Низкий уровень шума, низкое потребление энергии
• Столы для установки боксов УФ-очистителей
• Ящики для УФ-очистки с бактерицидным УФ-очистителем – рециркулятором AR — это запатентованный раствор Biosan.

РЕЦИРКУЛЯТОР — ОБЛУЧИТЕЛЬ Ультрафиолетовый бактерицидный РО-2-187

Ультрафиолет (УФ, УФ) & mdash; электромагнитное излучение, занимающее спектральный диапазон между видимым и рентгеновским излучением.Длины волн УФ-излучения находятся в диапазоне от 10 до 400 нм (7,5 & sdot; 1014 & mdash; 3 & sdot; 1016 Гц).
Облучатель бактерицидный & mdash; Это устройство открытого типа, предназначенное для кварцевания (обеззараживания) воздуха и поверхностей в помещении с прямыми ультрафиолетовыми лучами бактерицидного действия (253,7 нм). Убивает (инактивирует) вирусы, бактерии, плесень, грибки, дрожжи, споры и другие инфекционные микроорганизмы.
ПО-2-187 — дезинфекционное устройство, совмещающее в себе два типа назначения: открытое и закрытое.Основное различие между этими двумя типами заключается в том, как они работают. Облучатель открытого типа. Позволяет кварцевать как воздух, так и все поверхности в помещении благодаря прямым УФ-лучам. (При работе рекомендуется использовать специальные очки для защиты глаз от ультрафиолета. Во время работы облучателя людям и животным необходимо покинуть обработанное помещение. Также необходимо удалить из помещения все комнатные растения. Никогда не смотрите на работающем облучателе (это может привести к ожогам кожи и слизистых оболочек глаза).Рециркулятор — устройство закрытого типа. Кварц закрытого типа только воздух, но при такой дезинфекции люди могут находиться в помещении. Это достигается за счет прокачки воздуха вентиляторами через корпус устройства, в котором установлены бактерицидные лампы. Корпус
РО-2-187 выполнен из стали с противоударным покрытием. Два режима работы & ndash; рециркулятор (закрытый), облучатель (открытый). РО-2-187 можно повесить на стену или поставить на подставку для удобной переноски между помещениями. Для удобства эксплуатации есть таймер с механическим регулятором для установки времени автоматического отключения.Рекомендуется устанавливать устройство в помещении площадью 60-90м3.